Imagerie du petit animal (IPAM)

Un accès à l’imagerie en temps réel, non invasive et multimodale pour les petits animaux, en particulier les rongeurs.

Site de la plateforme

Imagerie du petit animal (IPAM)

Un accès à l’imagerie en temps réel, non invasive et multimodale pour les petits animaux, en particulier les rongeurs.

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Imagerie du petit animal (IPAM)

La plateforme IPAM propose des modalités d'imagerie en physiopathologique des petits animaux. Elle regroupe 3 plateaux techniques, chacun affilié à une unité de recherche, notamment à l’Institut de génomique fonctionnelle (IGF), à l’Institut de recherche en cancérologie de Montpellier (IRCM) et au laboratoire Physiologie et médecine expérimentale (PhyMedExp). Leur complémentarité permet d’obtenir des informations anatomiques, fonctionnelles et moléculaires en temps réel, de l’échelle subcellulaire à l’organisme entier.

La plateforme développe et met à disposition des approches d’imagerie intégrant un suivi longitudinal et multimodal de l’animal pour l’évaluation des fonctions biologiques normales ou altérées par la pathologie dans un contexte d’étude portant essentiellement sur la santé humaine. Les principales applications de l’imagerie intravitale sont l’imagerie cellulaire mono et multiphotonique couplée à des manipulations optiques, l’imagerie échographique et photoacoustique à haute résolution, ou encore, l’imagerie nucléaire et bioluminescente.

A moyen terme, l’objectif d’IPAM est de continuer à réduire l’utilisation d'animaux en proposant des solutions d’imagerie in vivo ou ex vivo sur des tissus biologiques reconstitués tels que des organoïdes, des xénogreffes dérivées de tumeurs de patients (PDX), ou des ensembles cellulaires intégrés au sein de nanopuces.

Expertises et services

Imagerie de fluorescence à haute résolution sur microenvironnement tissulaire in vivo (flux sanguin, pression partielle en oxygène tissulaire, senseurs de ligands extracellulaires, signaux calciques…),
Imagerie unique in vivo macro-micro avec des objectifs longue distance (distance de travail 2 cm et grossissement x20),
Manipulation laser ciblée (optogénétique, ablation cellulaire) combinée à l’imagerie haute résolution dynamique,
Imagerie de fluorescence in vivo avec miniscopes sur animaux libres de leurs mouvements,
Suivi dynamique in vivo de molécules fluorescentes exogènes dans les tissus,
Imagerie superficielle ou en profondeur pour des caractérisations anatomiques (épaisseur de parois, diamètre de cavités...),
Caractérisation fonctionnelle, hémodynamique et moléculaire de tissus (débits vasculaires, perfusion tissulaire, contractilité myocardique...),
Suivi non invasif de la progression tumorale et caractérisation de nouvelles molécules thérapeutiques,
Accompagnement personnalisé pour la mise en place et la réalisation de projets,
Développement et transfert de technologies d’imagerie vers l’in vivo,
Formation aux techniques d’imagerie et d’analyse d’images.

Moyens et équipements

Système Vevo 3100 LAZR-X (VisualSonics) pour l’échographie et la photoacoustique,
Camera IVIS Lumina II (PerkinElmer) pour la bioluminescence,
NanoSPECT-CT (Mediso) pour l’imagerie nucléaire,
Stéréomicroscope M2Dicovery (Zeiss) pour l’imagerie intravitale monophotonique,
Microscope 7MP pour l’imagerie intravitale multiphotonique,
Microscope FVMPE-RS (Olympus) équipé de 2 lasers pulsés infrarouge Chameleon (Coherent) et Insight (Spectra-Physics) pour l’imagerie intravitale multiphotonique couplée à la manipulation optogénétique,
Miniscopes nVista (Inscopix) et OEPS (Electronica) de 2g pour l’imagerie intravitale monophotonique.

<hr>Microscope multi-photonique Olympus adapté à l’imagerie in vivo chez le petit animal et équipé de 2 lasers IR collimatés.

<hr>Système Vevo LAZR-X pour l’échographie photoacoustique à haute résolution.

<hr>Exemple d'imagerie obtenue avec une caméra de bioluminescence IVIS Lumina.

<hr>Exemple d'imagerie obtenue en fluorescence corps entier avec une caméra adaptée à la bioluminescence et à la fluorescence.

<hr>Vascularisation tumorale observée par échographie Doppler.

<hr>Analyse en 3D de la déformation cardiaque après un infarctus.

<hr>Hypoxie cérébrale observée par imagerie photoacoustique.

<hr>Image 3D de vaisseaux du système hypothalamo-hypophysaire acquise par imagerie multi-photonique.

<hr>Exemple d’imagerie multi-photonique montrant des cellules hypophysaires (vert) associées à des capillaires sanguins en rendu volumétrique (magenta).

Comment soumettre un projet ?

Pour soumettre un projet à la plateforme IPAM, vous pouvez envoyer un mail à l’adresse [email protected]. Les protocoles d’expérimentation in vivo devront impérativement être déclarés et validés auprès du Ministère de l'enseignement supérieur et de la recherche. Les autorisations relatives au projet devront être fournies au responsable de l’animalerie au sein de laquelle les expérimentations seront menées.

Les consommables de base nécessaires à la mise en œuvre des prestations seront fournis par la plateforme et inclus dans le coût de ses services. Les consommables et produits biologiques spécifiques devront en revanche être fournis. La qualité de ces produits est de la responsabilité de l'utilisateur et la plateforme ne saurait être tenue responsable de la production de résultats non conformes. Le mode d'administration et les éventuelles informations spécifiques associées à ces produits, comme la toxicité, devront également être indiqués. Si besoin, la plateforme pourra signer un accord de confidentialité. L’utilisateur devra dans tous les cas prendre connaissance de la charte d’utilisation de la plateforme et la signer avant le démarrage des prestations.

Exemple d'utilisation

Une étape précoce dans le contrôle de la reproduction et de la préservation des espèces

Chez l’Homme et tous les vertébrés, la survie des espèces dépend d’une étape essentielle du développement embryonnaire : la migration des neurones synthétisant et sécrétant la gonadolibérine (GnRH) depuis la placode nasale vers le cerveau. À cet endroit, les neurones rejoignent l’hypothalamus pour contrôler la libération des gonadotrophines hypophysaires (LH et FSH) et ainsi, la reproduction et la persistance des espèces. Grâce à l’expertise et aux équipements de la plateforme IPAM, des chercheurs israéliens, mexicains et français ont étudié cette migration neuronale chez un modèle de vertébré, le poisson zèbre, par transgénèse et imagerie longitudinale multiphotonique. Les résultats de ces travaux apportent une vision totalement nouvelle sur ce phénomène de migration.

Pour en savoir plus : Golan M. et al. (2021). Synaptic communication mediates the assembly of a self-organizing circuit that controls reproduction. Science Advances, 7(8):pp.eabc8475.

Contact

IPAM
Biocampus Montpellier
CNRS UAR3426, Inserm US09
Université de Montpellier
141 rue de la Cardonille
34094 Montpellier
Région : Occitanie+33(0)4 67 41 52 32
[email protected]
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